Introduction
Le cœur est un organe vital chez de nombreux animaux, y compris les poissons. Comprendre son fonctionnement, notamment le mécanisme de contraction, est essentiel pour appréhender la physiologie de ces organismes. Cet article explore en détail le fonctionnement du cœur des poissons, en mettant en lumière les mécanismes de contraction et les facteurs qui l'influencent.
Organisation du Système Circulatoire chez les Insectes
Bien que cet article se concentre sur le cœur des poissons, il est utile de noter, à titre comparatif, que chez les insectes, le système circulatoire diffère de celui des vertébrés tant par sa morphologie que par son fonctionnement.
Structure du Vaisseau Dorsal chez les Insectes
Le vaisseau dorsal, contractile, est généralement constitué d’une ou de deux couches de cellules musculaires disposées en cercle ou en spirale. Le muscle cardiaque des insectes peut adopter différentes orientations. Les muscles du vaisseau dorsal se caractérisent par des sarcomères courts, avec des bandes d’environ 2 µm de long. Les ostiums, qui permettent l’entrée de l’hémolymphe dans le cœur, sont des ouvertures en forme de fentes situées sur la paroi latérale du cœur. Les ostiums possèdent deux lèvres, une antérieure et une postérieure, qui se rétractent vers le cœur pour former une valvule. Ce mécanisme permet l’entrée de l’hémolymphe lors de la diastole tout en empêchant son reflux vers l’extérieur durant la systole.
Mécanisme de Contraction du Cœur de Poisson
Grâce à une technique d’imagerie microscopique à grande vitesse, des chercheurs ont capturé le moment exact où les cellules cardiaques d’embryons de poissons-zèbres ont commencé à battre. Elles se mettent soudainement à se contracter à l’unisson et se synchronisent rapidement.
Études sur les Embryons de Poissons-Zèbres
Une équipe de l’École de médecine de Harvard (HMS) s’est demandée comment le cœur embryonnaire enclenche-t-il sa première contraction et comment les cardiomyocytes se coordonnent-ils afin de régulariser le rythme des battements au sein du tissu cardiaque. L’imagerie calcique à grande vitesse a été utilisée sur des embryons de poissons-zèbres (Danio rerio), 18 à 22 heures après la fécondation. Au cours de cette période, les populations de cellules progénitrices cardiaques bilatérales se rassemblent pour former une structure en forme de cône. Un capteur d’ions calcium (une protéine fluorescente) a été incorporé afin de capturer toute activité potentielle.
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Observations et Découvertes
Les chercheurs ont constaté qu’un ensemble de cardiomyocytes passait soudainement d’un état statique à la contractilité. Ils commençaient à battre à l’unisson pour se synchroniser spontanément. Le phénomène se manifeste par des pics simultanés de signaux calciques et électriques. La transition s’effectuait dans une fenêtre étroite de développement, durant environ 20 heures. De plus, la dynamique rythmique du calcium apparaissait bien avant que les contractions mécaniques puissent être détectées.
Contraction Initiale et Coordination
Des activités transitoires unicellulaires lentes et clairsemées deviennent notamment des pics aigus à l’échelle du tissu. Ces résultats suggèrent que les cardiomyocytes peuvent battre individuellement afin de donner lieu au premier battement unifié. La région de contraction primordiale différait chez chaque poisson. Les cardiomyocytes embryonnaires ont la capacité de battre d’eux-mêmes, ce qui rend difficile la prédiction de l’emplacement des premiers battements.
Échocardiographie : Un Outil d'Exploration du Cœur
L’échocardiographie est une technique d’imagerie, non irradiante et le plus souvent non invasive, utilisant les propriétés physiques des ultrasons. L’échocardiographie est aujourd’hui un outil indispensable dans la pratique quotidienne du cardiologue en milieu hospitalier ou en ville.
Principe de l'Échocardiographie
L’examen échocardiographique est tout d’abord un examen morphologique dynamique. Il permet d’obtenir des coupes des structures cardiaques en 2 dimensions au cours du cycle cardiaque. La technique TM (temps - mouvement) représente le déplacement des structures cardiaques sur une ligne au cours du temps (méthode unidimensionnelle). L’étude morphologique est couplée à une analyse Doppler, qui permet de mesurer la vitesse de déplacement du sang ou des structures cardiaques au cours du temps.
Techniques Doppler
Quatre techniques Doppler sont utilisées : le doppler pulsé (DP), le doppler continu (DC), le doppler couleur et le doppler tissulaire (DTI). Elles sont complémentaires.
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- Doppler Pulsé (DP) : Permet de mesurer les vitesses de flux dans une zone spécifique, mais est limité par le phénomène d’aliasing.
- Doppler Continu (DC) : Permet d’enregistrer des vitesses de flux très élevées, mais ne renseigne pas sur le point d’origine des vitesses le long du faisceau des ultrasons.
- Doppler Couleur : Utilise la technologie du DP avec un affichage des vitesses encodé en couleur.
- Doppler Tissulaire (DTI) : Permet d’étudier le mouvement des parois myocardiques en se basant sur le décalage de fréquence de l’onde réfléchie sur le tissu myocardique.
Fenêtres d'Exploration Échocardiographique
Les différentes modalités techniques sont utilisées selon les informations qui peuvent être obtenues sur chaque fenêtre d’exploration.
- Fenêtre Parasternale Grand Axe (PSGA) : Permet de mesurer le diamètre du VG en télédiastole et en télésystole, les épaisseurs des parois, ce qui permet de calculer la masse ventriculaire gauche.
- Fenêtre Para sternale Petit Axe (PSPA) : Permet de visualiser le VD, le VG qui apparaît sphérique ainsi que les piliers de la valve mitrale situés au niveau de la portion moyenne du VG.
- Fenêtre Apicale : Les coupes 4, 2, 3 cavités permettent d’analyser la cinétique segmentaire du VG, d’analyser la fonction systolique ventriculaire du VG, de mesurer le volume de l’OG.
- Fenêtre Sous-Costale : Permet de visualiser les 4 cavités cardiaques et un épanchement péricardique.
Facteurs Influant sur l'Apport Diagnostique
L’apport diagnostique de l’ETT est conditionné par trois paramètres principaux : le type de matériel utilisé (qualité intrinsèque), la perméabilité du patient aux ultrasons et l’expérience de l’opérateur.
Échocardiographie de Stress
L’échocardiographie de stress pharmacologique nécessite la mise en place d’une perfusion en intraveineuse pour le patient. La perfusion en continue et de manière progressive de Dobutamine permettra d’augmenter la consommation d’oxygène du myocarde.
Rythme Cardiaque : Définition et Mesure
Le rythme cardiaque est le nombre de battements du cœur sur une durée connue, donnant une fréquence cardiaque. Chaque animal a un rythme cardiaque moyen qui lui est propre. Chez l'humain, ce rythme est d'environ 70 battements par minute au repos.
Mécanisme du Battement Cardiaque
Un battement de cœur est une action de pompage en deux parties qui prend environ une seconde. Au fur et à mesure que le sang s'accumule dans les cavités supérieures (les oreillettes droite et gauche), le stimulateur cardiaque naturel (le noeud SA) envoie un signal électrique qui provoque la contraction des oreillettes. Cette contraction pousse le sang à travers les valves tricuspide et mitrale vers les cavités inférieures au repos (les ventricules droit et gauche). Cette partie de la phase de pompage en deux phases (la plus longue des deux) est appelée diastole. La deuxième partie de la phase de pompage commence lorsque les ventricules sont remplis de sang. Les signaux électriques du noeud SA voyagent le long d'une voie de cellules vers les ventricules, les faisant se contracter. C'est ce qu'on appelle la systole.
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Facteurs Influant sur le Rythme Cardiaque
Le cerveau suit les conditions qui vous entourent (climat, stress et niveau d'activité physique) et ajuste votre système cardiovasculaire pour répondre à ces besoins. Le rythme cardiaque normal au repos pour les adultes varie de 60 à 100 battements par minute. Généralement, un rythme cardiaque plus faible au repos implique une fonction cardiaque plus efficace et une meilleure forme cardiovasculaire.
Organes Pulstatiles Accessoires chez les Insectes
Chez les insectes, en plus du vaisseau dorsal, divers organes pulsatiles accessoires contribuent à la circulation de l'hémolymphe.
Organes Pulsatiles Alaires
Chez la plupart des insectes adultes, un organe pulsatile spécifique assure l’irrigation des ailes en hémolymphe. Un réservoir hémolymphatique (ou espace de stockage) situé sous la partie postérieure du tergum (scutellum). Un diaphragme musculaire indépendant du cœur entoure le réservoir sous-scutellaire sur sa face ventrale, relié au scutellum par plusieurs filaments élastiques. L’organe pulsatile alaire est une expansion du vaisseau dorsal, formant un diverticule. Chaque segment du ptérothorax contient une ampoule pulsatile, reliée à l’aorte par un vaisseau étroit. Cette ampoule est suspendue au tergum par des ligaments élastiques et possède une paroi dorsale musclée.
Organes Pulsatiles Antennaires
Les insectes possèdent un organe pulsatile à la base de chaque antenne, permettant d’assurer la circulation de l’hémolymphe. Chez la les blattes du genre Periplaneta : un muscle unique relie les deux ampoules antennaires. Lorsqu’il se contracte, il provoque la dilatation simultanée des deux ampoules, permettant ainsi l’entrée de l’hémolymphe par un ostium. La majorité des terminaisons nerveuses sont concentrées dans l’ampoule, qui pourrait ainsi jouer un rôle de centre neurohémal.
Organes Pulsatiles des Pattes
Chez les Hémiptères : le septum subit une torsion de 90° à l’extrémité proximale du tibia. À cet endroit, on trouve un muscle spécifique qui, lorsqu’il se contracte compresse un sinus, forçant l’hémolymphe à remonter vers le thorax.
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